Assistante Ingénieur / Technicienne de recherche en biologie cellulaire ou moléculaire








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VIMOND Nadège Née le 23 février 1983 à Saint Lô (MANCHE - 50)p1050172 modif


5, rue Desaix 32 ans

44000 NANTES Célibataire

Portable : 06 84 03 95 94 Permis de conduire B

E-mail : nadegevimond@yahoo.com


Assistante Ingénieur / Technicienne de recherche en biologie cellulaire ou moléculaire

Spécialisée en immunologie humaine

EXPERIENCES PROFESSIONNELLES

Mars 2015 à mi-février 2015 : Unité INSERM 892, équipe 4 au Centre de Recherche en Cancérologie Nantes-Angers, NANTES, dirigée par le Dr Marc GREGOIRE (supervisée par le Dr Jean-François FONTENEAU).

CDD de 11,5 mois en tant que technicienne de recherche de classe exceptionnelle en immunologie et immunomonitoring.

  • En charge d’un projet LabEx : Etude de biomarqueurs de cellules cancéreuses dans des liquides pleuraux de patients atteints de mésothéliome.

    • Techniques de cytométrie en flux, de culture cellulaire et dosages immunoenzymatiques.


Novembre 2013 à février 2015 : Laboratoire d’Immuno-Oncologie à Gustave Roussy, VILLEJUIF, dirigé par le Dr Nathalie CHAPUT.

CDI de mission en tant que Technicienne de recherche spécialisée en immunologie cellulaire et immunomonitoring.

  • En charge de plusieurs études mono et multicentriques pour un suivi immunologique de patients au cours de leur traitement (Etudes cliniques GOLD, GEFTREM, MEL-IPI-RX, COMBAT, ArgX110-1201 et étude de recherche sur les Leucémies MyéloMonocytaires Chroniques).

  • Mise en place du nouveau laboratoire : gestion de l’équipement, des commandes, rédaction de procédures techniques, formation des nouveaux arrivants.

  • Techniques de dissociation de biopsies, de cytométrie en flux et technologie Luminex.


Octobre 2011 à octobre 2013 : Centre d’Investigation Clinique en Biothérapie (CIC BT507) à Gustave Roussy, VILLEJUIF, dirigé par le Pr Laurence ZITVOGEL.

CDI de mission en tant que Technicienne de recherche spécialisée en immunologie cellulaire et immunomonitoring.

  • En charge de deux études cliniques pour un suivi immunologique :

    • Etude DEX2 multicentrique de phase II d’immunisation par exosomes de cellules dendritiques autologues chez des patients inopérables atteints de Cancers Bronchiques Non à Petites Cellules (CBNCP) avancés (stade IIIb, IV) répondeurs ou stabilisés par chimiothérapie d’induction.

    • Etude MEL-IPI-RX de phase I d’escalade de dose de radiothérapie administrée en combinaison avec un anticorps monoclonal anti CTLA-4 (Ipilimumab) chez des patients atteints de mélanomes malins avancés de stade III ou IV inopérables.

  • Techniques de cytométrie en flux, de culture cellulaire et dosages immunoenzymatiques.


Juin 2006 à septembre 2013 : Module de Biologie des Cellules Circulantes de la Recherche Translationnelle à Gustave Roussy, VILLEJUIF, dirigé par le Dr Françoise FARACE.

CDD de 3 et 6 mois, puis CDI de mission en tant que Technicienne de recherche en biologie cellulaire.

  • Etudes mono et multicentriques de phase I ou II permettant l’évaluation de bio-marqueurs prédictifs de la réponse ou de la résistance à des thérapies ciblées chez des patients atteints de cancers.

  • Techniques de cytométrie en flux, d’immunofluorescence directe ou indirecte (telle que la microscopie confocale), d’immunomarquage (VERIDEX Cellsearch®), de dosages immunoenzymatiques et de culture cellulaire.


Janvier à avril 2006 : Plate-forme de recombinaison homologue à la faculté de médecine de l’Institut Cochin, Paris, dirigée par le Dr Ghislaine HAMARD.

CDD de 4 mois en tant qu’Assistante Ingénieur en biologie.

  • Production de lignées de souris knock-out pour différentes équipes désireuses de mener à bien un projet d’invalidation de gènes.

  • Techniques de culture cellulaire, d’électroporation de transgène, de génotypage par RT-PCR, de caryotypage, de micro-injection de cellules ES, et entretien des souris (alimentation, entretien des cages, gestion des naissances, identification des animaux).

FORMATION

Mai 2015 : Formation professionnelle sur le cytomètre en flux LSRFortessa X-20 16 couleurs (Becton Dickinson) à la plate-forme de cytométrie du CRCNA.

Juin 2014 : Formation professionnelle sur l’appareil Magpix technologie Luminex (BIORAD) à Gustave Roussy.

Février 2014 : Formation professionnelle sur le cytomètre en flux Gallios 10 couleurs (Beckman Coulter) à Gustave Roussy.

Novembre 2011 : Formation professionnelle sur le cytomètre en flux FACSCanto II 8 couleurs (Becton Dickinson) à Gustave Roussy.

Fin 2009 - 2010 : Formation à l’identification des Cellules Tumorales Circulantes (CTC) par microscopie optique (Dr. P. Vielh) à Gustave Roussy.

20 et 21 janvier 2009 : Formation professionnelle sur le cytomètre en flux CYAN 9 couleurs (Beckman Coulter) à Gustave Roussy.

10 au 14 mars 2008 : Formation professionnelle sur l’appareil Immunicon (VERIDEX) (Centre Ortho-Clinical) à Illkirch Graffenstaden.
2005 : Licence professionnelle de Biotechnologie, option technicien en détection de marqueurs biologiques - Faculté de Versailles - St Quentin en Yvelines (mention Assez Bien).

2004 : B.T.S. d’Analyses Biologiques - Lycée Bréquigny - Rennes.

2001 : Baccalauréat S.T.L., option Biochimie Génie Biologique - Lycée Littré - Avranches.
COMPETENCES

  • Autres techniques pratiquées :

Biologie moléculaire (extraction ADN et ARN, PCR quantitative avec sondes TaqMan, RT-PCR sur gel d’agarose), immunofluorescence (microscopie confocale), dosages immunoenzymatiques (ELISA, technologie Luminex), purification d’exosomes issus de cellules dendritiques à l’aide de colonnes de diafiltration et ultracentrifugation sur gradient de sucrose.


  • Appareils utilisés :

UNICAP 100 E, VIDAS, OPTICON 2, CHROMO 4, ABI-PRISM 7700, FACSCalibur, LSR 2, VERIDEX (Immunicon), FC500, CYAN, appareil ISET, FACSCanto II, Gallios, Magpix, LSRFortessa X-20.


  • Outils de communication :

  • Anglais professionnel.

  • Word, Excel, PowerPoint, Internet, Bioinformatique (Pubmed, NCBI, Infobiogen, Genome Browser, PHASE, Hapmap, Biocompare,…), logiciels internes à Gustave Roussy (e-simbad, win-simbad).


PUBLICATIONS ET TRAVAUX

  • Articles :

Jacques N, Vimond N, Conforti R, Griscelli F, Lecluse Y, Laplanche A, Malka D, Vielh P, Farace F - Quantification of circulating mature endothelial cells using a whole blood four-color flow cytometric assay - Journal of Immunological Methods (15 septembre 2008)337(2) :132-43.
Farace F, Gross-Goupil M, Tournay E, Taylor M, Vimond N, Jacques N, Billiot F, Mauguen A, Hill C, Escudier B - Levels of circulating CD45(dim)CD34(+)VEGFR2(+) progenitor cells correlate with outcome in metastatic renal cell carcinoma patients treated with tyrosine kinase inhibitors - British Journal of Cancer (29 mars 2011)104(7) :1144-50.
Malka D, Boige V, Jacques N, Vimond N, Adenis A, Boucher E, Pierga JY, Conroy T, Chauffert B, François E, Guichard P, Galais MP, Cvitkovic F, Ducreux M, Farace F - Clinical value of circulating endothelial cell levels in metastatic colorectal cancer patients treated with first-line chemotherapy and bevacizumab - Annals of Oncology (23 avril 2012)23(4) :919-27.
Farace F, Massard C, Vimond N, Drusch F, Jacques N, Billiot F, Laplanche A, Chauchereau A, Lacroix L, Planchard D, Le Moulec S, André F, Fizazi K, Soria JC, Vielh P - A direct comparison between CellSearch™ and ISET™ systems for circulating tumour-cell detection in patients with metastatic carcinomas - British Journal of Cancer (6 septembre 2011)105(6) :847-53.
Boige V, Malka D, Bourredjem A, Dromain C, Baey C, Jacques N, Pignon JP, Vimond N, Bouvet-Forteau N, De Baere T, Ducreux M, Farace F - Efficacy, safety, and biomarkers of single-agent bevacizumab therapy in patients with advanced hepatocellular carcinoma - The Oncologist (2012)17(8) :1063-72.
Rusakiewicz S, Semeraro M, Sarabi M, Desbois M, Locher C, Mendez R, Vimond N, Concha A, Garrido F, Isambert N, Chaigneau L, Le Brun-Ly V, Dubreuil P, Cremer I,Caignard A, Poirier-Colame V, Chaba K, Flament C, Halama N, Jäger D, Eggermont A, Bonvalot S, Commo F, Terrier P, Opolon P, Emile JF, Coindre JM, Kroemer G, Chaput N, Le Cesne A, Blay JY, Zitvogel L - Immune infiltrates are prognostic factors in localized gastrointestinal stromal tumors - Cancer Research (15 juin 2013)73(12):3499-510.
Hannani D, Vétizou M, Enot D, Rusakiewicz S, Chaput N, Klatzmann D, Desbois M, Jacquelot N, Vimond N, Chouaib S, Mateus C, Allison JP, Ribas A, Wolchok JD, Yuan J, Wong P, Postow M, Mackiewicz A, Mackiewicz J, Schadendorff D, Jaeger D, Korman AJ, Bahjat K, Maio M, Calabro L, Teng MW, Smyth MJ, Eggermont A, Robert C, Kroemer G, Zitvogel L – Anticancer immunotherapy by CTLA-4 blockade : obligatory contribution of IL-2 receptors and negative prognostic impact of soluble CD25 - Cell Research (mars 2015)25(3):399-400.

Besse B, Charrier M, Lapierre V, Dansin E, Lantz O, Planchard D, Livartosky A, Barlesi F, Laplanche A, Ploix S, Vimond N, Peguillet I, Théry C, Lacroix L, Zoernig I, Dhodapkar K, Dhodapkar M, Viaud S, Soria JC, Reiners KS, Pogge von Strandmann E, Vély F, Rusakiewicz S, Eggermont A, Pitt JM, Zitvogel L, Chaput N - Dendritic Cell derived Exosomes as maintenance immunotherapy after first line chemotherapy in Non-Small-Cell Lung Cancer - OncoImmunology (12 août 2015) 10.1080/2162402X.2015.1071008.

Jacquelot N, Enot D, Flament C, Vimond N, Blattner C, Pitt JM, Yamazaki T, Roberti MP, Daillère R, Vétizou M, Poirier-Colame V, Semeraro M, Caignard A, Slingluff C, Sallusto F, Rusakiewicz S, Weide B, Marabelle A, Kohrt H, Dalle S, Cavalcanti A, Kroemer G, Di Giarcomo AM, Maio M, Wong P, Yuan J, Wolchok J, Umansky V, Eggermont A, Zitvogel L – Chemokine receptor patterns in lymphocytes mirror metastatic spreading in melanoma - Journal of Clinical Investigation (8 février 2016).

  • Abstract :

Rameau P, Vimond N, Judor J.P, Laplace-Builhé C, Farace F - Quantification de microparticules plaquettaires en cytométrie de flux sur FACS Canto2 - Présenté à l’A.F.C. (Association Française de Cytométrie) Octobre 2008.


  • Posters :

Rameau P, Vimond N, Judor J.P, Laplace-Builhé C, Farace F - Quantification de microparticules plaquettaires en cytométrie de flux sur FACS Canto2 - Présenté à l’A.F.C. (Association Française de Cytométrie) Octobre 2008.
Taylor M, Koscielny S, Vimond N, Jacques N, Escudier B, Farace F - Cellules endothéliales et progéniteurs endothéliaux circulants dans le cancer du rein métastatique : biomarqueurs potentiels des thérapies anti-angiogéniques ? - Présenté à l’A.F.C. (Association Française de Cytométrie) Octobre 2008.
Coutzac C, Vimond N, Hannani D, Vetizou M, Beal C, Mateus C, Robert C, Zitvogel L, Racine A, Carbonnel F, Chaput N - Rôle de l’anticorps anti-CTLA-4 sur l’immunité digestive dans un modèle murinPrésenté aux J.F.H.O.D. (Journées Francophones d’Hépato-gastroentérologie et d’Oncologie Digestive) Mars 2014.
REFERANTS

  • Dr Marc GREGOIRE, (marc.gregoire@univ-nantes.fr / 02-28-08-02-37) U892 équipe 4 au CRCNA, Nantes.

  • Dr Jean-François FONTENEAU, (jean-françois.fonteneau@univ-nantes.fr / 02-28-08- 02-39) U892 équipe 4 au CRCNA, Nantes.

  • Pr Laurence ZITVOGEL, (laurence.zitvogel@gustaveroussy.fr / 01-42-11-50-41) U1015 à Gustave Roussy, Villejuif.

  • Dr Nathalie CHAPUT, (nathalie.chaput@gustaveroussy.fr / 01-42-11-56-55) laboratoire LIO à Gustave Roussy, Villejuif.


AUTRES CENTRES D’INTERET

Natation, cyclisme, parapente, philatélie, généalogie.

Nadège VIMOND CV du 16/03/2016 Page /3


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